一种系统性检测miRNA启动子甲基化及转录因子结合的方法

allin2025-04-01  11


本发明涉及分子生物,具体为一种系统性检测mirna启动子甲基化及转录因子结合的方法。


背景技术:

1、微小rna(microrna,mirna)是一类能在基因转录后水平调节靶蛋白表达的非编码小分子rna,其通过降解靶mrna和抑制mrna翻译两种方式精细地、定量地调节细胞的多种功能。mirna在细胞分化、发育、疾病发生等过程中发挥重要作用。研究表明,表达紊乱的mrna参与了机体诸多疾病的发生发展。然而,目前对mirna表达调控机制的理解尚不深入,特别是在启动子区域与上游转录因子的相互作用方面。

2、研究表明,mirna受到的调控主要体现在dna甲基化和转录因子结合方面。目前常用的mirna甲基化检测方法包括:甲基化特异性聚合酶链反应和焦磷酸测序;转录因子结合检测方法主要为:电泳迁移率变化分析、染色质免疫沉淀和荧光素酶报告基因分析。虽然此些方法可以具体确定甲基化位点和转录因子结合位点,然而实验耗时、耗力,步骤繁琐,检测费用较高,不适用于初期筛选。

3、目前,有诸多数据库可以用来预测特定转录因子在dna上的结合,然而缺乏系统性、连贯性,且匹配度不高,干扰性较强。综上所述的问题,为此,我们提出一种系统性检测mirna启动子甲基化及转录因子结合的方法。


技术实现思路

1、本发明的目的在于提供一种系统性检测mirna启动子甲基化及转录因子结合的方法,解决了现有的问题。

2、为实现上述目的,本发明提供如下技术方案:

3、一种系统性检测mirna启动子甲基化及转录因子结合的方法,包括以下步骤:

4、步骤s1、预测mirna启动子甲基化情况;

5、步骤s2、预测转录因子结合情况;

6、步骤s3、验证转录因子与启动子的结合;

7、步骤s4、验证转录因子对mirna表达的影响。

8、优选的,所述步骤s1中,利用mirbase和ensembl网站确定mir-384基因启动子区;embosscpgplot网站分析启动子区dna序列的甲基化情况。

9、优选的,所述步骤s2中,ecrbrowser网站分析启动子区转录因子结合区域及其保守性;jaspar数据库筛选启动子区结合的转录因子。

10、优选的,所述步骤s3中,染色质免疫沉淀检测细胞中mir-384基因启动子区stat3的结合量,免疫共沉淀使用p-stat3抗体。

11、优选的,所述步骤s3中,细胞经1%甲醛交联后,加入裂解液,超声破碎染色质至200~1000bp,后续步骤严格按照ezmagnachiptmhisens试剂盒说明进行。

12、优选的,所述步骤s3中,提纯的dna使用荧光定量pcr试剂盒进行检测,引物如下:

13、site1,5’-atgctataaccaccacca,5’-cttgggatattgttctgtaa;

14、site2,5’-tgctgccttctgctttga,5’-caggcattgtgaacaatttcta。

15、优选的,所述步骤s4中,qrt-pcr检测stat3激活是否可以调节mir-384的转录;

16、步骤s41、将细胞培养于rpmi-1640培养基,rpmi-1640培养基采用10%fbs,1mmol/l谷氨酰胺,1%非必需氨基酸配制,隔天半量换液;

17、步骤s42、将细胞分为对照组、il-620ng/ml处理组和ag49010μm处理组;

18、步骤s43、trizol法提取细胞总rna,使用mircuteplusmirnafirst-strandcdna试剂盒合成cdna,采用mircuteplusmirnaqpcr试剂盒上机检测。

19、优选的,所述步骤s43中,引物如下:rorγt,5’-tgcaagactcatcgacaagg,5’-aggggattcaacatcagtgc;β-actin,5’-gagaccttcaacaccccagcc,5’-aatgtcacgcacgatttccc。

20、一种系统性检测mirna启动子甲基化及转录因子结合的方法,包括以下步骤:

21、步骤s1、预测mirna启动子甲基化情况;

22、步骤s2、预测转录因子结合情况;

23、步骤s3、验证转录因子与启动子的结合;

24、步骤s4、验证转录因子对mirna表达的影响。

25、一种系统性检测mirna启动子甲基化及转录因子结合的方法,具体的包括以下步骤:

26、步骤s1、预测mirna启动子甲基化情况:

27、利用ucsc和ensembl网站确定mir-30a基因启动子区;embosscpgplot网站分析启动子区dna序列的甲基化情况;

28、步骤s2、预测转录因子结合情况:

29、ecrbrowser网站分析启动子区转录因子结合区域及其保守性;

30、jaspar数据库筛选启动子区结合的转录因子;

31、步骤s3、验证转录因子与启动子的结合:

32、染色质免疫沉淀检测细胞中mir-30a基因启动子区creb的结合量;

33、细胞经1%甲醛交联后,加入裂解液,超声破碎染色质至200~1000bp,后续步骤严格按照试剂盒说明进行。

34、步骤s4、验证转录因子对mirna表达的影响:

35、qrt-pcr检测creb抑制是否可以调节mir-30a的转录。

36、与现有技术相比,本发明的有益效果如下:

37、本发明结合生物信息学和分子生物学技术,以mir-384和mir-30a基因启动子区为靶点,探索mir-384和mir-30a的转录调节机制,以期为研究mirna的表达提供一种可行的实验思路。

38、本发明中,p-stat3可以与mir-384启动子顺式激活元件中的保守位点结合,creb可以与mir-30a启动子顺式激活元件中的保守位点结合。

39、本发明中,stat3调节mir-384的转录,creb调节mir-30a的转录。

40、本发明经电泳迁移率变化分析和染色质免疫沉淀实验验证,结果准确,成功率高,此方法可简便、快捷、准确、无费用地筛选出有效的mirna上游调控方式。



技术特征:

1.一种系统性检测mirna启动子甲基化及转录因子结合的方法,其特征在于,包括以下步骤:

2.根据权利要求1所述的一种系统性检测mirna启动子甲基化及转录因子结合的方法,其特征在于,所述步骤s1中,利用mirbase和ensembl网站确定mir-384基因启动子区;embosscpgplot网站分析启动子区dna序列的甲基化情况。

3.根据权利要求1所述的一种系统性检测mirna启动子甲基化及转录因子结合的方法,其特征在于,所述步骤s2中,ecrbrowser网站分析启动子区转录因子结合区域及其保守性;jaspar数据库筛选启动子区结合的转录因子。

4.根据权利要求1所述的一种系统性检测mirna启动子甲基化及转录因子结合的方法,其特征在于,所述步骤s3中,染色质免疫沉淀检测细胞中mir-384基因启动子区stat3的结合量,免疫共沉淀使用p-stat3抗体。

5.根据权利要求4所述的一种系统性检测mirna启动子甲基化及转录因子结合的方法,其特征在于,所述步骤s3中,细胞经1%甲醛交联后,加入裂解液,超声破碎染色质至200~1000bp,后续步骤严格按照ezmagnachiptmhisens试剂盒说明进行。

6.根据权利要求5所述的一种系统性检测mirna启动子甲基化及转录因子结合的方法,其特征在于,所述步骤s3中,提纯的dna使用荧光定量pcr试剂盒进行检测,引物如下:

7.根据权利要求1所述的一种系统性检测mirna启动子甲基化及转录因子结合的方法,其特征在于,所述步骤s4中,qrt-pcr检测stat3激活是否可以调节mir-384的转录;

8.根据权利要求7所述的一种系统性检测mirna启动子甲基化及转录因子结合的方法,其特征在于,所述步骤s43中,引物如下:rorγt,5’-tgcaagactcatcgacaagg,5’-aggggattcaacatcagtgc;β-actin,5’-gagaccttcaacaccccagcc,5’-aatgtcacgcacgatttccc。

9.根据权利要求1所述的一种系统性检测mirna启动子甲基化及转录因子结合的方法,其特征在于,包括以下步骤:

10.根据权利要求9所述的一种系统性检测mirna启动子甲基化及转录因子结合的方法,其特征在于,具体的包括以下步骤:


技术总结
本发明公开了一种系统性检测mi RNA启动子甲基化及转录因子结合的方法,包括以下步骤:步骤S1、预测mi RNA启动子甲基化情况;步骤S2、预测转录因子结合情况;步骤S3、验证转录因子与启动子的结合;步骤S4、验证转录因子对mi RNA表达的影响。本发明经电泳迁移率变化分析和染色质免疫沉淀实验验证,结果准确,成功率高,此方法可简便、快捷、准确、无费用地筛选出有效的mi RNA上游调控方式。

技术研发人员:韩晶晶,曲学彬,洪蕊,张琳琳,李昱霏
受保护的技术使用者:江苏医药职业学院
技术研发日:
技术公布日:2024/10/31
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